非洲豬瘟病毒熒光 PCR 核酸檢測試劑盒（快提+預分裝）

使用說明書 獸用 【操作步驟】

一、樣品制備

1、血液樣品：采集抗凝血（抗凝劑為 EDTA）或血清樣品，編號備用。

2、組織樣品：采集、肝、淋巴結、扁桃體等病變組織樣品或軟蜱 0.1g(黃豆粒大小)，眼科剪剪

碎于組織勻漿器或研缽中充分勻漿或研磨，再加 1mL 生理鹽水混勻，4℃條件下 8000 rpm/分鐘離心 2 分

鐘，取上清液于滅菌離心管中，編號備用。

二、DNA 提取

取反應液 A 20μL 分別加入到新的 1.5mL 離心管，加入抗凝血或血清或組織上清液 2 μL，混勻，室

溫（20℃左右）靜置 3 分鐘，加入反應液 B 20 μL，吹打混勻即可，若為抗凝全血，則需 8000rpm/分鐘再

離心 2 分鐘后做為待檢 DNA 溶液。

三、PCR 擴增

1、試劑準備：根據(jù)當次實驗所需要的反應數(shù)（反應數(shù)=待檢樣本數(shù)+陰性對照+陽性對照），取等量的

八聯(lián) PCR 反應管，在室溫融化后，瞬離，并做好相應標記（操作過程要避光），剩余試劑放回-20℃冷凍

保存；

2、加樣擴增：分別向 PCR 管中加入 5 μL 待檢樣本 DNA 或陰性對照或陽性對照，混勻并瞬離，放入

熒光 PCR 儀上運行以下程序：

熒光通道選擇 FAM，在 40 循環(huán)階段每個循環(huán)的 55℃時收集熒光信號。設置擴增體系為 25 μL，同時

要選擇 passive reference 和 quencher 為 none 的模式。

（注：若熒光 PCR 儀(如 ABI7500)按說明書中的反應程序設置后因持溫時間短無法運行，可將預擴增和 PCR

擴增條件變更為 95℃：5 秒 55℃：30 秒。）

【結果判定】

1、基線和閾值設定：參照儀器自動產生或設定的閾值，手動閾值參照陰性對照上線設定。

2、質量控制：反應結束后，陰性對照的檢測結果應無特定的擴增曲線，Ct 值為＞38 或無；陽性對照

的 Ct 值應≤30.0，且明顯的擴增曲線；否則實驗視為無效。

3、樣品判定：待檢樣品熒光信號有指數(shù)型增加，且結果顯示 Ct 值＜35.0，報告為陽性；未檢測到 Ct

值或 Ct 值＞38 或無明顯擴增曲線，則樣品判定為陰性。35≤Ct 值≤38 時，復檢一次，重復結果為陽性者判

定為陽性，否則判定為陰性。

【注意事項】

1、實驗前請仔細閱讀本試劑盒說明書，嚴格按照操作步驟執(zhí)行，在操作過程中對時間、試劑體積等控制可以獲得好的結果。

2、實驗室應嚴格按照有關規(guī)定分區(qū)管理。各區(qū)間人員、器材、試劑及空氣流向應有嚴格要求。

3、有關耗材確保潔凈、無菌，酸提取完成后盡快進入下一步試驗或冷凍保存。

4、對于熒光 PCR 管要避免徒手或使用過的手套接觸，檢測過程中使用不帶熒光物質一次性乳膠手套。

5、凍存試劑使用前應于室溫下完全融化，瞬時離心使液體完全沉于管底，操作時應注意避光，避免強

光暴露和長時間光照。

6、樣品、陰性對照封蓋后，在通風環(huán)境添加陽性對照并及時封蓋，避免組分間及氣溶膠等假陽性污染。

7、擴增反應完畢后的 PCR 管嚴禁開蓋，應和產生的其它試驗廢棄物一起及時收集，遠離 PCR 實驗室

進行無害化處理。

【規(guī)格】48 頭份/盒。

【貯藏與有效期】-20℃以下避光保存，有效期 12 個月。

僅供獸醫(yī)診斷使用